تعیین تیپهای کاست کروموزومی ژن mecAدر ایزولههای استافیلوکوکوس اپیدرمیدیس جداشده از عفونتهای دستگاه ادراری در استان چهارمحال و بختیاری

نوع مقاله: اصیل

نویسندگان

1 کارشناسی ارشد میکروبیولوژی، گروه میکروبیولوژی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران

2 استاد میکروبیولوژی، گروه میکروبیولوژی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران

3 دانشیار، دکترای تخصصی، گروه میکروبیولوژی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران

چکیده

چکیده
مقدمه:از آنجایی که استافیلوکوکوس اپیدرمیدیس مهمترین گونه از استافیلوکوکهای کواگولاز منفی میباشد و عفونتهای مختلف بیمارستانی از جمله عفونتهای دستگاه ادراری را ایجاد میکند، توجه به الگوی مقاومتی این ارگانیسم به ویژه مقاومت به متیسیلین از اهمیت خاصی برخوردار میباشد. در این راستا، مطالعه حاضر با هدف تعیین الگوی مقاوت آنتی بیوتیکی سویه­های استافیلوکوکوس اپیدرمیدیس جداسازی شده از نمونه­های ادراری در بیمارستانهای سطح استان چهارمحال و بختیاری انجام شد.
مواد و روشها: تعداد 50 نمونه ادرار از افراد مبتلا به عفونتهای دستگاه ادراری (در حجم 20 میلیلیتر) در ظرف استریل نمونه­گیری ادرار از بیمارستانهای سطح استان چهارمحال و بختیاری گرفته شد و به روش کشت میکروبی و مولکولی آزمایش گردید. پس از تأیید مولکولی ایزوله­های جداشده از آزمایش انتشار دیسکی ساده جهت تعیین الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی و از روش PCR (Polymerase Chain Reaction) به­ منظور تعیین تیپهای کاست کروموزومی ژن mecAاستفاده شد.
یافته­ها: از میان نمونه های مورد بررسی، 23 نمونه (46درصد) آلوده به استافیلوکوکوس اپیدرمیدیس بودند و بر مبنای آزمایشPCRواجد ژن 16srDNAشناخته شدند. الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی این نمونه­ها به روش آنتی بیوگرام مطابق با معیار CLSI (Clinical & Laboratory Standards Institute) تعیین گردید. تمام ایزوله­های مورد مطالعه دارای مقاومت آنتی بیوتیکی چندگانه بودند که در این میان بیشترین مقاومت آنتی­بیوتیکی نسبت به دو آنتی­بیوتیک پنیسیلین ( 65/95درصد) و تتراسایکلین ( 30/91درصد) و کمترین میزان مقاومت نسبت به آنتی بیوتیک نیتروفورانتوئین (78/34درصد) بود. همچنین، 91/73 درصد از ایزوله­ها حامل ژن mecA بودند که تیپ SCCmecШبا فراوانی 05/47 درصد شایعترین تیپ کاست کروموزومی ژن mecAدر ایزوله­های مقاوم به متیسیلین بود.
نتیجه­گیری: شیوع مقاومت به طیف وسیعی از آنتی بیوتیکهای خطوط اول و دوم درمانی در میان سویه های استافیلوکوکوس اپیدرمیدیس نشاندهنده پراکندگی و انتشار این سویه­ها در بیمارستانهای استان چهارمحال و بختیاری می­باشد و لازم است که داروی مورد نیاز براساس نتیجه آنتی­بیوگرام انتخاب گردد

کلیدواژه‌ها


1. Bohlouli P, Nahaei MR, Farajnia S, Varshochi M, Ghojazadeh M, Akbari Dibavar M, et al. Cassette chromosome mec typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates collected from Sina and Imam Reza hospitals of Tabriz. Med J Tabriz Uni Med Sci Health Ser. 2016; 38(4):12-21. [in Persian]
2. Carroll KC, Hobden JA, Miller S, Morse SA, Mietzner TA, Detrick B, et al. Adelberg’s medical microbiology. 27th ed. New York: McGraw-Hill; 2016.
3. Sharifi Yazdi MK, Soltan Dallal MM. Prevalence study of enterococus and staphylococci resistance to vancomycin isolated from urinary tract infections. Tehran Univ Med J. 2013; 71(4):250-8.
4. Rahimi MK, Falsafi S, Tayebi Z, Masoumi M, Reza Ferasatpour MR, Mirzaei A. Antimicrobial susceptibility pattern of human pathogenic bacteria isolated from patients with urinary tract infection. N Cell Mol Bio J. 2014; 4(15):83-9. [In Persian]
5. Quinn PJ, Markey BK, Leonard FC, Hartigan P, Fanning S, Fitzpatrick ES. Veterinary microbiology and microbial disease. 2nd ed. New Jersey: John Wiley & Sons; 2011. P. 912.
6. Ramazanzadeh R, Moradi G, Zandi S, Mohammadi S, Rouhi S, Pourzare M, et al. A survey of contamination rate and antibiotic resistant of Gramnegative bacteria isolated from patients in various wards of Toohid and Besat Hospitals of Sanandaj city during 2013-2014 years. Pajouhan Sci J. 2016; 14(3):11-9. [in Persian]
7. Ikeda Y, Ohara-Nemoto Y, Kimura S, Ishibashi K, Kikuchi K. PCR-based identification of Staphylococcus epidermidis targeting gseA encoding the glutamic-acid-specific protease. Can J Microbiol. 2004; 50(7):493-8.
8. Momtaz H, Hafezi L. Meticillin-resistant Staphylococcus aureus isolated from Iranian hospitals: virulence factors and antibiotic resistance properties. Bosn J Basic Med Sci. 2014; 14(4):219-26.
9. Watts JL, Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests, approved standard. 27th ed. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2017.
10. Archer GL, Climo MW. Antimicrobial susceptibility of coagulase-negative staphylococci. Antimicrob Agents Chemother. 1994; 38(10):2231-7.
11. Razavi S, Rastgar LA, Ghazi F. Molecular sub typing of coagulase negative staphylococcus by pulse field gel electrophoresis. Med J Tabriz Uni Med Sci Health Serv. 2006; 28(3):53-57. [in Persian]
12. Secchi C, Antunes AL, Perez LR, Cantarelli VV, d'Azevedo PA. Identification and detection of methicillin resistance in non-epidermidis coagulasenegative staphylococci. Braz J Infect Dis. 2008; 12(4):316-20.
13. Sutherland R, Rolinson GN. Characteristics of methicillin-resistant Staphylococci. J Bacteriol. 1964; 87:887-99.
14. Reynolds R, Potz N, Colman M, Williams A, Livermore D, MacGowan A. Antimicrobial susceptibility of the pathogens of bacteraemia in the UK and Ireland 2001-2002: the BSAC Bacteraemia Resistance Surveillance Programme. J Antimicrob Chemother. 2004; 53(6):1018-32.
15. Duerden BI, Collier L, Balows A, Sussman M. Topley & Wilson's microbiology and microbial infections: systematic bacteriology. 9th ed. New York: Hodder Education Publishers; 1998. P. 1501.
16. Sahm DF, Marsilio MK, Piazza G. Antimicrobialresistance in key bloodstream bacterial isolates: electronic surveillance with the Surveillance Network Database--USA. Clin Infect Dis. 1999; 29(2):259-63.
17. Diekema DJ, Pfaller MA, Schmitz FJ, Smayevsky J, Bell J, Jones RN, et al. Survey of infections due to Staphylococcus species: frequency of occurrence and antimicrobial susceptibility of isolates collected in the United States, Canada, Latin America, Europe, and the Western Pacific region for the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program, 1997-1999. Clin Infect Dis. 2001; 32(Suppl 2):S114-32.
18. Hewitt JH, Coe AW, Parker MT. The detection of methicillin resistance in Staphylococcus aureus. J Med Microbiol. 1969; 2(4):443-56.
19. Javadpour S, Karimi E, Karmostaji A. Frequency and anti-biogram pattern of coagulase negative Staphylococcus in clinical specimens of Shahid Mohammadi Hospital in patients, Bandar-Abbas, Iran. Afr J Microbiol Res. 2010; 4(14):1581-3.
20. Wisplinghoff H, Rosato AE, Enright MC, Noto M, Craig W, Archer GL. Related clones containing SCCmec type IV predominate among clinically significant Staphylococcus epidermidis isolates. Antimicrob Agents Chemother. 2003; 47(11):3574-9.
21. Bouchami O, Achour W, Hassen AB. Species distribution and antibiotic sensitivity pattern of coagulase-negative Staphylococci other than Staphylococcus epidermidis isolated from various clinical specimens. Afr J Microbiol Res. 2011;
5(11):1298-305.
22. Rahimi F, Bouzari M, Maleki Z, Rahimi F. Antibiotic susceptibility pattern among Staphylococcus spp. with emphasis on detection of mecA gene in methicillin resistant Staphylococcus aureus isolates. Iran J Clin Infect Dis. 2009; 4(3):143-50.
23. Duran N, Ozer B, Duran GG, Onlen Y, Demir C. Antibiotic resistance genes & susceptibility patterns in staphylococci. Indian J Med Res. 2012; 135: 389-96.
24. Shojaee S, Nahaie MR, Nahaie M, Farajnia S, Ahangarzadeh RM, Nikvesh S. Study of methicillinresistance by oxacillin disc diffusion and PCR methods in staphylococcus epidermidis isalates collected from blood cultures and their antibiotic susceptibility. Med J Tabriz Uni Med Sci Health Serv. 2009; 31(1):39-44. [In Persian]